做过LDH细胞毒性实验的小伙伴一定深有体会:加试剂、控孵育时间、搬板到酶标仪读取信号手动操作、板片来回转移、孵育时间把控不一致,都会直接引入实验偏差,辛苦做出来的数据CV偏大,重复性差,高通量筛选场景下痛点尤为突出。
有没有方案,把试剂添加、孵育、荧光读数全部整合在自动化工作站上,不再需要来回搬运微孔板?
Hamilton 全新应用笔记给我们带来答案:基于 Microlab® STAR工作站搭配 FLUOREYE®‑ORO板载荧光检测模块,完成全自动LDH细胞膜完整性毒性分析。

实验背景:经典 LDH 毒性检测的痛点
LDH(乳酸脱氢酶)释放实验是细胞毒性、细胞膜损伤评估的经典手段:细胞膜破损后,胞内LDH释放至上清,催化底物生成荧光产物,荧光强度对应细胞损伤程度。
传统自动化流程短板:
工作站完成加样孵育后,需要把微孔板取出,转运至外部酶标仪读数
转运过程时间差、环境变化,给时间敏感型实验带来系统误差
人工介入步骤多,高通量筛选时批次间重复性难以保障
FLUOREYE‑ORO板载荧光模块直接集成在 Microlab STAR工作站台面,无需移出微孔板,直接在工作站甲板完成荧光采集,真正实现 “加样‑孵育‑读数" 单平台闭环工作流。
实验方案:Digitonin诱导HeLa细胞损伤模型
本次实验采用Promega CytoTox‑ONE™均相细胞膜完整性检测试剂盒,以洋地黄皂苷Digitonin梯度处理HeLa细胞构建细胞膜损伤模型。
实验流程
HeLa细胞铺于黑色96孔板,过夜培养;
工作站自动施加0‑100 µg/mL梯度Digitonin处理5 min;
自动加入CytoTox‑ONE™反应试剂,室温孵育10 min;
自动添加终止液;
FLUOREYE‑ORO板载直接读取荧光(Ex 560 nm / Em 625 nm);
同一块微孔板转移至传统酶标仪做对照比对(Ex 560 nm / Em 590 nm)。

FLUOREYE‑ORO关键参数支持自定义:LED功率、滤光片组合、测量高度、采集时长、背景扣除,全部在VENUS®软件内完成设置,适配不同检测体系。
实测数据:板载检测性能对标传统酶标仪
线性表现FLUOREYE‑ORO:R²=0.974;传统酶标仪:R²=0.981。两套设备均呈现荧光信号随Digitonin浓度升高而上升,复现剂量依赖性细胞膜损伤趋势。
重复性CV(变异系数)
FLUOREYE‑ORO平均 CV:1.15%
传统外置酶标仪平均 CV:3.15%
板载检测消除搬板操作,变异系数显著更低,数据一致性更强。
统计结果显示:低浓度药物组可以清晰分辨毒性差异;高浓度损伤平台期两组无显著性差异,与生物学预期保持一致。

方案核心优势总结
全流程一体化,无需搬板 试剂分配、孵育控时、荧光读数全部在 Microlab STAR台面完成,省去微孔板转运步骤,规避时间差带来的实验漂移。
降低人为干扰,提升可重复性 标准化液体处理 + 标准化计时 + 原位检测,减少人工介入,适合药物高通量细胞毒性筛选。
硬件模块化灵活切换FLUOREYE系列共用同一基座,仅更换移动检测头即可切换不同检测波长,适配多种荧光检测实验。
软件统一管控VENUS软件统一管理移液流程与荧光采集参数,自动完成空白、背景扣除,实验流程与数据溯源一体化。
本方案适合:化合物高通量毒性筛选、细胞膜损伤机制研究、细胞药物体外评价等细胞生物学实验场景。
LDH细胞毒性检测这类时间敏感型细胞实验,误差很多时候不是来自试剂盒,而是来自操作流程。FLUOREYE‑ORO板载荧光检测,把原来 “工作站+外置酶标仪" 两套设备的工作流收敛到一台平台,在保证检测性能的前提下,进一步释放自动化筛选的能力。
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